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更新時間:2026-02-09
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那么它具體怎么培養(yǎng)呢?
一、IPSC培養(yǎng)之實驗前準備
試劑:預(yù)熱的無滋養(yǎng)層培養(yǎng)基(如mTeSR™ Plus, E8)、基質(zhì)膠包被的培養(yǎng)板、解離試劑(如 Gentle Cell Dissociation Reagent, 不含酶)、PBS、ROCK抑制劑(Y-27632)。
設(shè)備:37°C, 5% CO?培養(yǎng)箱,倒置顯微鏡,超凈工作臺。
二、IPSC培養(yǎng)之基質(zhì)膠包被培養(yǎng)板
用預(yù)冷的PBS或無血清DMEM按說明書比例稀釋基質(zhì)膠。
迅速將稀釋液加入培養(yǎng)板中(6孔板約1 mL/孔),室溫靜置至少1小時或4℃過夜。
使用前吸棄包被液,無需晾干,直接接種細胞。
三、IPSC培養(yǎng)之日常觀察與換液
每日觀察:在顯微鏡下觀察細胞狀態(tài)。健康的iPSC克隆應(yīng)邊界清晰、細胞核大、核質(zhì)比高、克隆內(nèi)細胞排列緊密。邊緣出現(xiàn)扁平、拉長或透明的細胞是分化的征兆。
換液:每天換液一次。輕柔吸棄舊培養(yǎng)基,沿孔壁緩慢加入預(yù)溫的新鮮培養(yǎng)基,避免吹打克隆。
四、IPSC培養(yǎng)之傳代(關(guān)鍵步驟)
iPSC通常每4-7天傳代一次,當(dāng)克隆大到開始互相接觸時進行。
方案A:酶解法(EDTA或Accutase):
1. 吸棄培養(yǎng)基,用PBS輕柔清洗一次。
2. 加入適量含0.5 mM EDTA的PBS或Accutase,37℃孵育3-5分鐘。
3. 在顯微鏡下觀察,當(dāng)克隆邊緣開始卷起、細胞間隙變大時,迅速吸棄解離液。
4. 加入含10 μM ROCK抑制劑的完全培養(yǎng)基,用1mL移液器輕柔吹打成小團塊(約幾十到幾百個細胞一團)。切忌吹成單細胞!
5. 離心,重懸,按適當(dāng)比例(通常1:6至1:20)接種到新包被的板上。
方案B:手動挑克隆法:
用于去除分化部分、單克隆篩選或處理珍貴細胞系。
在顯微鏡下用拉細的巴斯德管或?qū)S锰翎?,物理刮取未分化的克隆區(qū)域,轉(zhuǎn)移至新孔。
關(guān)鍵點:傳代后24小時內(nèi),在培養(yǎng)基中加入ROCK抑制劑,可顯著提高克隆形成率和存活率。
五、IPSC培養(yǎng)之凍存與復(fù)蘇
凍存:使用適合無血清培養(yǎng)的專用凍存液(如CryoStor® CS10),或含10% DMSO + 30%血清替代物 + 60%基礎(chǔ)培養(yǎng)基的自配凍存液。以小團塊形式凍存。
復(fù)蘇:
1. 快速解凍細胞。
2. 用含大量ROCK抑制劑的培養(yǎng)基重懸并接種。
3. 24小時后全量換液為正常培養(yǎng)基。
六、 常見問題與對策
| 問題 | 可能原因 | 解決方案 |
| 自發(fā)分化率高 | 傳代過度消化(單細胞過多)、接種密度過低、細胞過密、培養(yǎng)基過期或pH不穩(wěn)定。 | 優(yōu)化消化時間;提高接種密度;及時傳代;使用新鮮培養(yǎng)基,檢查培養(yǎng)箱CO?濃度。 |
| 克隆不生長/死亡 | 傳代損傷(單細胞化嚴重)、復(fù)蘇損傷、ROCK抑制劑未加或失效、基質(zhì)膠包被失效。 | 傳代時保持細胞團塊;確保使用ROCK抑制劑;驗證基質(zhì)膠活性和包被流程。 |
| 細胞形態(tài)不佳(扁平、松散) | 開始分化、培養(yǎng)體系不適用、污染(如支原體)。 | 鏡下標(biāo)記并刮除分化區(qū)域;檢查培養(yǎng)基和基質(zhì)膠匹配性;進行支原體檢測。 |
| 克隆難以吹下 | 基質(zhì)膠批號差異、消化時間不足、細胞過度生長。 | 適當(dāng)延長消化時間或在37℃孵育;嘗試不同批號基質(zhì)膠。 |
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